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食品水质微生物检验实训 化妆品化验员证报考入口-培养基灭菌后怎么测促生长能力?
来源:圣问技术职业技能培训中心 | 作者:stspx134 | 发布时间: 2022-06-05 | 1 次浏览 | 🔊 点击朗读正文 ❚❚ | 分享到:
食品水质微生物检验实训 化妆品化验员证报考入口-培养基灭菌后怎么测促生长能力?

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食品水质微生物检验实训 化妆品化验员证报考入口-培养基灭菌后怎么测促生长能力?

培养基灭菌后的促生长能力测定是验证培养基质量的核心环节,目的是确认培养基是否具备支持特定微生物正常生长的能力。以下根据《中国药典》及GB 4789.28-2024等标准,系统介绍操作方法。

试验原理

将已知特性的标准菌株以低接种量(≤100 CFU)接种到待测培养基和对照培养基中,在规定的培养条件下培养,通过比较两者的微生物生长情况(菌落数量、形态特征、生长状态等),判断待测培养基的促生长性能是否合格。

试验准备

标准菌株选择

不同培养基对应不同的测试菌株,常用菌株包括:

测试菌株

保藏编号

类型

适用培养基

金黄色葡萄球菌

CMCC(B)26003 /   ATCC 6538

革兰氏阳性球菌

TSA、甘露醇氯化钠琼脂等

铜绿假单胞菌

CMCC(B)10104 /   ATCC 9027

革兰氏阴性杆菌

TSA、溴化十六烷基三甲铵琼脂等

枯草芽孢杆菌

CMCC(B)63501 /   ATCC 6633

革兰氏阳性芽孢杆菌

TSA

大肠埃希菌

CMCC(B)44102 /   ATCC 8739

革兰氏阴性杆菌

麦康凯琼脂、紫红胆盐葡萄糖琼脂等

白色念珠菌

CMCC(F)98001 /   ATCC 10231

酵母菌

TSA、SDA、念珠菌显色培养基等

黑曲霉

CMCC(F)98003 /   ATCC 16404

霉菌

TSA、SDA

菌株管理要求:试验用菌株的传代次数不得超过5代(从菌种保藏中心获得的干燥菌种为0代),并采用适宜的保藏技术确保菌株生物学特性稳定。

菌液制备

  • 将标准菌株接种至适宜的培养基上活化培养。

  • 用0.9%无菌氯化钠溶液或磷酸盐缓冲液制备菌悬液。

  • 逐级稀释至目标浓度,使接种量控制在**≤100 CFU/皿(管)**。

  • 也可使用商品化定量菌种(如冻干质控菌种)替代传统菌液制备,操作更简便、定量更准确。

对照培养基

  • 使用中国食品药品检定研究院提供的标准对照培养基,或经质控合格的培养基作为对照。

  • 若首次配制且无对照培养基,可与已知浓度的菌液计数值进行比较。

操作方法(按培养基类型分类)

固体培养基(计数用)

这是最常见的促生长试验类型,适用于TSA、PDA、SDA等计数培养基。

1.     接种:取适宜稀释度的菌悬液0.1 mL(接种量为50~250 CFU/皿),采用涂布法倾注法接种至待测培养基和对照培养基平板上。

2.     平行设置:每种试验菌平行制备2个平板

3.     培养:按标准规定的温度和时间培养。

4.     计数与比较:培养结束后计数菌落数,计算回收率。

液体培养基

适用于TGC(硫乙醇酸盐流体培养基)、TSB(胰酪大豆胨液体培养基)等。

1.     接种:将≤100 CFU的试验菌菌悬液接种至适量(日常使用最少量)待测培养基和对照培养基中。

2.     平行设置:每种试验菌平行制备2份(管)

3.     培养:按规定条件培养。

4.     观察:比较待测培养基与对照培养基的浑浊度,判断生长情况。

选择性/鉴别培养基

适用于麦康凯琼脂、紫红胆盐葡萄糖琼脂、甘露醇氯化钠琼脂等。

1.     接种:取≤100 CFU的试验菌菌悬液≥0.1 mL,采用表面涂布法接种至待测培养基和对照培养基平板上。

2.     培养:按规定条件培养(培养时间不大于规定的最短培养时间)。

3.     观察:比较菌落大小、形态特征、指示剂反应是否与对照培养基一致。

常用培养基的培养条件与判定标准

培养基

测试菌株

接种方式

培养条件

判定标准

TSA(胰酪大豆胨琼脂)

金黄色葡萄球菌、铜绿假单胞菌、枯草芽孢杆菌、白色念珠菌、黑曲霉

涂布法/倾注法

30~35℃,≤72 h

回收率0.5~2.0,菌落形态与对照一致

SDA(沙氏葡萄糖琼脂)

白色念珠菌、黑曲霉

涂布法

20~25℃,≤5天

回收率0.5~2.0,菌落形态与对照一致

TGC(硫乙醇酸盐流体培养基)

金黄色葡萄球菌、铜绿假单胞菌、枯草芽孢杆菌、白色念珠菌

直接接种

30~35℃,≤规定最短时间

与对照培养基比较,应生长良好(浑浊度一致)

麦康凯琼脂

大肠埃希菌

涂布法

30~35℃,≤18 h

菌落大小、形态、指示反应与对照一致

甘露醇氯化钠琼脂

金黄色葡萄球菌(促生长);大肠埃希菌(抑制)

涂布法

30~35℃

目标菌生长良好且指示反应正确;非目标菌不生长

结果判定标准

固体培养基(计数用)

回收率计算公式:

PR=待测培养基上的平均菌落数/对照培养基上的平均菌落数×100%

  • 合格标准:回收率在      50%~200% 之间(即比值0.5~2.0),且菌落形态、大小与对照培养基一致。

液体培养基

  • 合格标准:待测培养基与对照培养基比较,应有明显的微生物生长(浑浊度相当)。

选择性/鉴别培养基

  • 促生长:菌落大小、形态特征、指示剂反应与对照培养基一致。

  • 抑制能力:接种≥100 CFU的非目标菌,培养后应无菌生长

操作注意事项

  • 接种量控制:菌液浓度必须严格控制在≤100 CFU/皿,接种量过大会导致菌落重叠影响计数,过小则统计误差增大。

  • 涂布操作:菌液涂布后应待其被培养基吸收后再倒置培养,避免菌液被吸干后继续涂布造成机械损伤,导致回收率下降。

  • 培养时间:促生长试验的培养时间不得大于产品检验的最短培养时间。

  • 无菌对照:同时设置未接种的培养基作为阴性对照,确认无污染。

  • 记录完整性:全程记录菌株编号、传代次数、接种量、培养条件、菌落数、菌落形态等信息,确保可追溯。

📌 总结:促生长能力测定的核心流程是"选菌株→制备菌液→接种→培养→比较判定"。关键在于:接种量控制在≤100 CFU,设置对照培养基平行比较,固体培养基以回收率(50%~200%)和菌落形态为判定依据,液体培养基以浑浊度为判定依据。每批培养基在使用前都必须通过促生长试验,这是保证微生物检测结果可靠性的基本前提。

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